ฟื้นฟูไมโครไบโอมด้วยสายพันธุ์ที่สูญหายไป – ด้วยโยเกิร์ตจาก L. reuteri, L. gasseri และ B. coagulans - โยเกิร์ตสำหรับ SIBO

อัปเดตเมื่อวันที่ 31 พฤษภาคม 2026

สูตร: L. reuteri, L. gasseri และ B. coagulans – ทำโยเกิร์ต SIBO เอง

เหมาะสำหรับผู้ที่แพ้แลคโตสด้วย (ดูหมายเหตุด้านล่าง)

โปรดปฏิบัติตามอุณหภูมิการหมักอย่างเคร่งครัด

อุณหภูมิการหมักที่เหมาะสมสำหรับทั้งสามสายพันธุ์ร่วมกัน: 41 °C (106 °F)

ส่วนผสม (สำหรับโยเกิร์ตประมาณ 1 ลิตร)

• แคปซูล L. reuteri 4 แคปซูล (แคปซูลละ 5 พันล้าน CFU)
• แคปซูล L. gasseri 1 แคปซูล (12 พันล้าน CFU)
• แคปซูล B. coagulans 2 แคปซูล (แคปซูลละ 4 พันล้าน CFU)
• อินูลิน 1 ช้อนโต๊ะ (หรือ GOS หรือ XOS สำหรับผู้ที่แพ้น้ำตาลฟรุกโตส)
• นมโคเต็มมันเนยออร์แกนิก 1 ลิตร ไขมัน 3.8% ผ่านการฆ่าเชื้อด้วยอุณหภูมิสูงมากและทำให้เป็นเนื้อเดียวกัน หรือนม UHT
• (ยิ่งนมมีปริมาณไขมันสูง โยเกิร์ตก็จะยิ่งข้น)

หมายเหตุ:

• แคปซูล L. reuteri 1 แคปซูล มีอย่างน้อย 5 × 10⁹ (5 พันล้าน) CFU (en)/KBE (de)
• CFU ย่อมาจาก colony forming units หรือในภาษาเยอรมันคือ หน่วยก่อโคโลนี (KBE) หน่วยนี้ระบุจำนวนจุลินทรีย์ที่ยังมีชีวิตอยู่ในผลิตภัณฑ์

หมายเหตุเกี่ยวกับการเลือกนมและอุณหภูมิ

• อย่าใช้นมสด เพราะไม่คงตัวเพียงพอสำหรับการหมักเป็นเวลานาน และไม่ปลอดเชื้อ
• นม UHT เหมาะที่สุด (นมเก็บได้นาน นมผ่านกระบวนการให้ความร้อนสูงมาก) เพราะปลอดเชื้อและสามารถใช้ได้โดยตรง
• นมควรอยู่ที่อุณหภูมิห้อง หรืออุ่นอย่างเบามือในอ่างน้ำให้ถึง 37 °C (99 °F) หลีกเลี่ยงอุณหภูมิที่สูงกว่านี้ เพราะตั้งแต่ประมาณ 44 °C ขึ้นไป จุลินทรีย์โพรไบโอติกจะเสียหายหรือตาย

การเตรียม

1. เปิดแคปซูลทั้งหมด 7 แคปซูล แล้วเทผงลงในชามใบเล็ก
2. เติมอินูลิน 1 ช้อนโต๊ะต่อนม 1 ลิตร อินูลินทำหน้าที่เป็นพรีไบโอติกและช่วยส่งเสริมการเจริญเติบโตของแบคทีเรีย สำหรับผู้ที่แพ้น้ำตาลฟรุกโตส สามารถใช้ GOS หรือ XOS แทนได้
3. เติมนม 2 ช้อนโต๊ะลงในชาม แล้วคนให้เข้ากันอย่างทั่วถึงเพื่อไม่ให้จับตัวเป็นก้อน
4. เติมนมที่เหลือและคนให้เข้ากัน
5. เทส่วนผสมลงในภาชนะที่เหมาะสำหรับการหมัก (เช่น แก้ว)
6. ใส่ลงในเครื่องทำโยเกิร์ต ตั้งอุณหภูมิไว้ที่ 41 °C (106 °F) และหมักเป็นเวลา 36 ชั่วโมง

ตั้งแต่ชุดที่สองเป็นต้นไป ให้ใช้โยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะเป็นหัวเชื้อ

คุณเตรียมชุดแรกโดยใช้แคปซูลแบคทีเรีย

ตั้งแต่ชุดที่สองเป็นต้นไป ให้ใช้โยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะเป็นหัวเชื้อ วิธีนี้ใช้ได้เช่นกันหากชุดแรกยังเหลวหรือยังไม่ข้นแน่นสมบูรณ์ ตราบใดที่โยเกิร์ตมีกลิ่นสดใหม่ รสเปรี้ยวอ่อน ๆ และไม่มีสัญญาณการเน่าเสีย (ไม่มีรา ไม่มีสีผิดปกติ และไม่มีกลิ่นฉุน)

ต่อนม 1 ลิตร:

• โยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะ

• อินูลิน 1 ช้อนโต๊ะ

• นม UHT 1 ลิตร หรือนมเต็มมันเนยที่ผ่านการให้ความร้อนสูงเป็นพิเศษและทำให้เป็นเนื้อเดียวกัน

วิธีทำ:

1. ตักโยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะใส่ถ้วยเล็ก

2. เติมอินูลิน 1 ช้อนโต๊ะ แล้วคนให้เข้ากับนม 2 ช้อนโต๊ะจนไม่เหลือก้อน

3. เติมนมที่เหลือและคนให้เข้ากัน

4. เทส่วนผสมลงในภาชนะที่เหมาะสำหรับการหมัก แล้วนำไปใส่ในเครื่องทำโยเกิร์ต

5. หมักที่อุณหภูมิ 41 °C เป็นเวลา 36 ชั่วโมง

หมายเหตุ: อินูลินคืออาหารของจุลินทรีย์ สำหรับการทำแต่ละชุด ให้เติมอินูลิน 1 ช้อนโต๊ะต่อนม 1 ลิตร

หากคุณมีคำถาม เรายินดีให้ความช่วยเหลือทางอีเมลที่ team@tramunquiero.com หรือผ่านแบบฟอร์มติดต่อ

ทำไมต้อง 36 ชั่วโมง?

การเลือกใช้ระยะเวลาหมักนี้มีพื้นฐานทางวิทยาศาสตร์: L. reuteri ต้องใช้เวลาประมาณ 3 ชั่วโมงต่อการเพิ่มจำนวนเป็นสองเท่า ภายใน 36 ชั่วโมงจะมีการเพิ่มจำนวนเป็นสองเท่า 12 รอบ ซึ่งสอดคล้องกับการเติบโตแบบทวีคูณและทำให้ผลิตภัณฑ์สำเร็จรูปมีจุลินทรีย์โพรไบโอติกที่ออกฤทธิ์ในความเข้มข้นสูง นอกจากนี้ การบ่มที่นานขึ้นยังช่วยทำให้กรดแลคติกมีความคงตัวและทำให้จุลินทรีย์มีความทนทานเป็นพิเศษ

!ข้อควรทราบสำคัญ!

ผู้ใช้หลายคนมักทำโยเกิร์ตชุดแรกไม่สำเร็จ อย่างไรก็ตาม ไม่ควรทิ้งโยเกิร์ตชุดนั้น แต่แนะนำให้เริ่มทำชุดใหม่โดยใช้โยเกิร์ตจากชุดแรก 2 ช้อนโต๊ะ หากยังไม่สำเร็จ โปรดตรวจสอบอุณหภูมิของเครื่องทำโยเกิร์ต สำหรับเครื่องที่สามารถตั้งอุณหภูมิได้อย่างแม่นยำเป็นองศา โดยทั่วไปโยเกิร์ตชุดแรกจะสำเร็จได้ดี

เคล็ดลับเพื่อผลลัพธ์ที่สมบูรณ์แบบ

• โยเกิร์ตชุดแรกมักจะมีเนื้อเหลวหรือเป็นเม็ดเล็กน้อย ให้ใช้โยเกิร์ตจากชุดก่อนหน้า 2 ช้อนโต๊ะเป็นหัวเชื้อสำหรับรอบถัดไป เนื้อสัมผัสจะดีขึ้นในแต่ละชุดที่ทำใหม่
• ไขมันมาก = เนื้อสัมผัสข้นขึ้น: ยิ่งนมมีปริมาณไขมันสูง โยเกิร์ตก็จะยิ่งมีเนื้อครีมมี่มากขึ้น
• โยเกิร์ตที่ทำเสร็จแล้วเก็บในตู้เย็นได้นานถึง 9 วัน

คำแนะนำในการรับประทาน:

รับประทานโยเกิร์ตประมาณครึ่งถ้วย (ประมาณ 125 มล.) ทุกวัน โดยควรรับประทานเป็นประจำ แนะนำให้รับประทานในมื้อเช้าหรือเป็นของว่างระหว่างมื้อ วิธีนี้ช่วยให้จุลินทรีย์ที่มีอยู่พัฒนาได้อย่างเหมาะสมและช่วยสนับสนุนไมโครไบโอมของคุณอย่างต่อเนื่อง

การทำโยเกิร์ตด้วยนมจากพืช – ทางเลือกด้วยกะทิ

หากคุณกำลังพิจารณาใช้นมทางเลือกจากพืชเพื่อทำโยเกิร์ต SIBO เนื่องจากแพ้แลคโตส โปรดทราบว่าโดยทั่วไปแล้วไม่จำเป็น ระหว่างการหมัก แบคทีเรียโพรไบโอติกจะย่อยแลคโตสส่วนใหญ่ที่มีอยู่ ดังนั้นโยเกิร์ตที่ทำเสร็จแล้วจึงมักย่อยได้ดี แม้ในผู้ที่แพ้แลคโตส

อย่างไรก็ตาม ผู้ที่ต้องการหลีกเลี่ยงผลิตภัณฑ์นมด้วยเหตุผลด้านจริยธรรม (เช่น ผู้ที่รับประทานวีแกน) หรือเนื่องจากความกังวลด้านสุขภาพเกี่ยวกับฮอร์โมนในนมจากสัตว์ สามารถเลือกทางเลือกจากพืชอย่างกะทิได้ การทำโยเกิร์ตด้วยนมจากพืชมีความซับซ้อนทางเทคนิคมากกว่า เนื่องจากขาดแหล่งน้ำตาลธรรมชาติ (แลคโตส) ที่แบคทีเรียใช้เป็นแหล่งพลังงาน

ข้อดีและความท้าทาย

ข้อดีของผลิตภัณฑ์นมจากพืชคือไม่มีฮอร์โมนดังที่พบในนมวัว อย่างไรก็ตาม หลายคนรายงานว่าการหมักด้วยนมจากพืชมักไม่ให้ผลลัพธ์ที่แน่นอน โดยเฉพาะกะทิมักแยกตัวระหว่างการหมักเป็นส่วนที่เป็นน้ำและส่วนไขมัน ซึ่งอาจส่งผลต่อเนื้อสัมผัสและประสบการณ์ด้านรสชาติ

สูตรที่ใช้เจลาตินหรือเพกทินบางครั้งให้ผลลัพธ์ดีกว่า แต่ยังคงไม่แน่นอน ทางเลือกที่น่าสนใจคือการใช้กัวร์กัม ซึ่งไม่เพียงช่วยให้ได้เนื้อสัมผัสที่เป็นครีมตามต้องการ แต่ยังทำหน้าที่เป็นใยอาหารพรีไบโอติกสำหรับจุลินทรีย์ในลำไส้

สูตร: โยเกิร์ตกะทิผสมกัวร์กัม

เบสนี้ช่วยให้หมักโยเกิร์ตจากกะทิได้สำเร็จ และสามารถเริ่มหมักด้วยสายพันธุ์แบคทีเรียที่คุณเลือกได้ เช่น L. reuteri หรือหัวเชื้อจากชุดก่อนหน้า

ส่วนผสม

• กะทิ 1 กระป๋อง (ประมาณ 400 มล. ไม่มีสารเติมแต่งอย่างแซนแทนหรือเจลแลน อนุญาตให้มีกัวร์กัมได้)
• น้ำตาล 1 ช้อนโต๊ะ (ซูโครส)
• แป้งมันฝรั่งดิบ 1 ช้อนโต๊ะ
• กัวร์กัม ¾ ช้อนชา (ไม่ใช่ชนิดที่ผ่านการย่อยบางส่วน!)
• หัวเชื้อแบคทีเรียที่คุณเลือก (เช่น เนื้อหาภายในแคปซูล L. reuteri ที่มีอย่างน้อย 5 พันล้าน CFU)
  หรือ โยเกิร์ต 2 ช้อนโต๊ะจากชุดก่อนหน้า

การเตรียม

1. การให้ความร้อน
   อุ่นกะทิในหม้อใบเล็กด้วยไฟกลางจนมีอุณหภูมิประมาณ 82°C (180°F) และรักษาอุณหภูมินี้ไว้เป็นเวลา 1 นาที
2. การคนแป้งให้เข้ากัน
   คนผสมน้ำตาลและแป้งมันฝรั่ง จากนั้นยกลงจากเตา
3. ผสมกัวร์กัม
   หลังจากปล่อยให้เย็นประมาณ 5 นาที ให้คนกัวร์กัมลงไป จากนั้นปั่นด้วยเครื่องปั่นแบบมือถือหรือเครื่องปั่นตั้งโต๊ะอย่างน้อย 1 นาที เพื่อให้มีเนื้อสัมผัสเป็นเนื้อเดียวกันและข้น (คล้ายครีม)
4. ปล่อยให้เย็น
   ปล่อยให้ส่วนผสมเย็นลงจนถึงอุณหภูมิห้อง
5. เติมแบคทีเรีย
   ค่อย ๆ คนหัวเชื้อโพรไบโอติกให้เข้ากัน (ห้ามปั่น)
6. การหมัก
   เทส่วนผสมลงในภาชนะแก้ว แล้วหมักเป็นเวลา 48 ชั่วโมงที่อุณหภูมิประมาณ 37°C (99°F)

ทำไมต้องใช้กัวร์กัม?

กัวร์กัมเป็นใยอาหารธรรมชาติที่ได้จากเมล็ดกัวร์ โดยส่วนใหญ่ประกอบด้วยโมเลกุลน้ำตาลกาแลกโทสและแมนโนส (กาแลกโตแมนแนน) และทำหน้าที่เป็นใยอาหารพรีไบโอติกที่หมักโดยแบคทีเรียที่มีประโยชน์ในลำไส้ ตัวอย่างเช่น เปลี่ยนเป็นกรดไขมันสายสั้นอย่างบิวทิเรตและโพรพิโอเนต

ประโยชน์ของกัวร์กัม:

• การทำให้เบสโยเกิร์ตคงตัว: ช่วยป้องกันการแยกตัวของไขมันและน้ำ
• ฤทธิ์พรีไบโอติก: ส่งเสริมการเจริญเติบโตของสายพันธุ์แบคทีเรียที่มีประโยชน์ เช่น Bifidobacterium, Ruminococcus และ Clostridium butyricum
• สมดุลของไมโครไบโอมดีขึ้น: ช่วยสนับสนุนผู้ที่มีภาวะลำไส้แปรปรวนหรืออุจจาระเหลว
• เพิ่มประสิทธิภาพของยาปฏิชีวนะ: งานวิจัยพบว่าอัตราความสำเร็จในการรักษา SIBO (ภาวะแบคทีเรียในลำไส้เล็กเจริญเติบโตมากเกินไป) สูงขึ้น 25%

สำคัญ: ห้ามใช้กัวร์กัมชนิดไฮโดรไลซ์บางส่วน เพราะไม่มีคุณสมบัติทำให้เกิดเจลและไม่เหมาะสำหรับทำโยเกิร์ต

เหตุผลที่เราแนะนำให้ใช้ 3–4 แคปซูลต่อหนึ่งชุด

สำหรับการหมักครั้งแรกด้วย Limosilactobacillus reuteri เราแนะนำให้ใช้ 3 ถึง 4 แคปซูล (15 ถึง 20 พันล้าน CFU) ต่อหนึ่งชุด

ปริมาณนี้อ้างอิงตามคำแนะนำของ ดร.วิลเลียม เดวิส ซึ่งอธิบายในหนังสือ “Super Gut” (2022) ว่าจำเป็นต้องมีปริมาณเริ่มต้นอย่างน้อย 5 พันล้านหน่วยก่อโคโลนี (CFU) เพื่อให้การหมักสำเร็จ ปริมาณเริ่มต้นที่สูงกว่า คือประมาณ 15 ถึง 20 พันล้าน CFU ให้ผลที่มีประสิทธิภาพเป็นพิเศษ

เบื้องหลังคือ L. reuteri จะเพิ่มจำนวนเป็นสองเท่าประมาณทุก 3 ชั่วโมงภายใต้สภาวะที่เหมาะสม ในช่วงเวลาหมักทั่วไป 36 ชั่วโมง จะเกิดการเพิ่มจำนวนเป็นสองเท่าประมาณ 12 ครั้ง ซึ่งหมายความว่าในทางทฤษฎี ปริมาณเริ่มต้นที่ค่อนข้างน้อยก็อาจเพียงพอที่จะผลิตแบคทีเรียจำนวนมากได้

อย่างไรก็ตาม ในทางปฏิบัติ การใช้ปริมาณเริ่มต้นสูงถือว่าเหมาะสมด้วยเหตุผลหลายประการ ประการแรก ช่วยเพิ่มโอกาสให้ L. reuteri ตั้งตัวได้อย่างรวดเร็วและเป็นสายพันธุ์เด่นเมื่อเทียบกับเชื้อแปลกปลอมที่อาจมีอยู่ ประการที่สอง ความเข้มข้นเริ่มต้นสูงช่วยให้ค่า pH ลดลงอย่างสม่ำเสมอ ซึ่งทำให้สภาวะการหมักโดยทั่วไปมีความเสถียร ประการที่สาม ความหนาแน่นเริ่มต้นที่ต่ำเกินไปอาจทำให้การหมักเริ่มช้าหรือการเจริญเติบโตไม่เพียงพอ

ดังนั้น เราแนะนำให้ใช้ 3 ถึง 4 แคปซูลสำหรับชุดแรก เพื่อให้แน่ใจว่าโยเกิร์ตจะเริ่มเพาะได้อย่างน่าเชื่อถือ หลังจากการหมักครั้งแรกสำเร็จ โดยทั่วไปสามารถใช้โยเกิร์ตนี้เพาะต่อได้ถึง 20 ครั้ง ก่อนที่จะแนะนำให้ใช้หัวเชื้อสด

เริ่มใหม่หลังจากหมักครบ 20 ครั้ง

คำถามที่พบบ่อยในการหมักด้วย Limosilactobacillus reuteri คือ: คุณสามารถนำหัวเชื้อโยเกิร์ตกลับมาใช้ใหม่ได้กี่ครั้งก่อนที่จะต้องใช้หัวเชื้อสด? ดร.วิลเลียม เดวิสแนะนำในหนังสือ Super Gut (2022) ว่าไม่ควรเพาะโยเกิร์ต Reuteri หมักต่อเนื่องเกิน 20 รุ่น (หรือชุดการผลิต) แต่ตัวเลขนี้มีหลักฐานทางวิทยาศาสตร์รองรับหรือไม่? และเหตุใดจึงเป็น 20 โดยเฉพาะ ไม่ใช่ 10 หรือ 50?

เกิดอะไรขึ้นระหว่างการถ่ายหัวเชื้อ?

เมื่อคุณทำโยเกิร์ต Reuteri แล้ว คุณสามารถใช้โยเกิร์ตนั้นเป็นหัวเชื้อสำหรับการทำชุดถัดไปได้ วิธีนี้เป็นการถ่ายโอนแบคทีเรียมีชีวิตจากผลิตภัณฑ์ที่เสร็จแล้วไปยังสารละลายอาหารใหม่ (เช่น นม หรือนมจากพืช) เป็นวิธีที่ประหยัดทรัพยากร ช่วยประหยัดแคปซูล และมักใช้กันในทางปฏิบัติ

อย่างไรก็ตาม การนำหัวเชื้อเดิมกลับมาใช้ซ้ำอย่างต่อเนื่องนำไปสู่ปัญหาทางชีวภาพ:
การเปลี่ยนแปลงของจุลินทรีย์

การเปลี่ยนแปลงของจุลินทรีย์ – วัฒนธรรมเปลี่ยนแปลงอย่างไร

ในการถ่ายเชื้อแต่ละครั้ง องค์ประกอบและคุณสมบัติของวัฒนธรรมแบคทีเรียอาจค่อย ๆ เปลี่ยนแปลงได้ สาเหตุมีดังนี้:

• การกลายพันธุ์แบบเกิดขึ้นเองระหว่างการแบ่งเซลล์ (โดยเฉพาะเมื่อมีการหมุนเวียนสูงในสภาพแวดล้อมที่อบอุ่น)
• การคัดเลือกประชากรย่อยบางกลุ่ม (เช่น กลุ่มที่เจริญเติบโตเร็วกว่าเข้ามาแทนที่กลุ่มที่เติบโตช้ากว่า)
• การปนเปื้อนจากจุลินทรีย์ที่ไม่พึงประสงค์จากสิ่งแวดล้อม (เช่น เชื้อโรคในอากาศและจุลินทรีย์ประจำถิ่นในครัว)
• การปรับตัวที่เกี่ยวข้องกับสารอาหาร (แบคทีเรีย “ปรับตัว” ให้เข้ากับนมจากสัตว์บางชนิดและเปลี่ยนแปลงกระบวนการเผาผลาญ)

ผลลัพธ์คือ หลังจากผ่านไปหลายรุ่น จะไม่สามารถรับประกันได้อีกต่อไปว่าในโยเกิร์ตยังมีแบคทีเรียชนิดเดียวกัน หรืออย่างน้อยก็เป็นสายพันธุ์ย่อยที่มีฤทธิ์ทางสรีรวิทยาเหมือนเดิม ตั้งแต่เริ่มต้น

เหตุผลที่ Dr. Davis แนะนำ 20 รุ่น

เดิมที Dr. William Davis พัฒนาวิธีทำโยเกิร์ต L. reuteri สำหรับผู้อ่านของเขาโดยเฉพาะ เพื่อใช้ประโยชน์ต่อสุขภาพบางประการ (เช่น การหลั่งออกซิโทซิน การนอนหลับที่ดีขึ้น และการปรับปรุงสภาพผิว) ในบริบทนี้ เขาเขียนว่าวิธีดังกล่าว “ใช้ได้ผลอย่างสม่ำเสมอประมาณ 20 รุ่น” ก่อนที่จะควรใช้หัวเชื้อใหม่จากแคปซูล (Davis, 2022)

เรื่องนี้ไม่ได้อ้างอิงจากการทดสอบในห้องปฏิบัติการอย่างเป็นระบบ แต่พิจารณาจากประสบการณ์จริงด้านการหมักและรายงานจากชุมชนของเขา

“หลังจากนำกลับมาใช้ซ้ำประมาณ 20 รุ่น โยเกิร์ตของคุณอาจสูญเสียประสิทธิภาพหรือหมักได้ไม่สม่ำเสมอ เมื่อถึงจุดนั้น ให้ใช้แคปซูลใหม่เป็นหัวเชื้ออีกครั้ง”
— Super Gut, Dr. William Davis, 2022

เขาให้เหตุผลเชิงปฏิบัติต่อจำนวนดังกล่าวว่า หลังจากเพาะเลี้ยงต่อประมาณ 20 ครั้ง ความเสี่ยงที่การเปลี่ยนแปลงที่ไม่พึงประสงค์จะเริ่มสังเกตเห็นได้จะเพิ่มขึ้น เช่น เนื้อสัมผัสเหลวลง กลิ่นหอมเปลี่ยนไป หรือประสิทธิผลต่อสุขภาพลดลง

มีการศึกษาทางวิทยาศาสตร์เกี่ยวกับเรื่องนี้หรือไม่

ยังไม่มีการศึกษาทางวิทยาศาสตร์โดยเฉพาะเกี่ยวกับโยเกิร์ต L. reuteri ที่ผ่านรอบการหมักมากกว่า 20 รอบ อย่างไรก็ตาม มีงานวิจัยเกี่ยวกับความคงตัวของแบคทีเรียกรดแลกติกเมื่อผ่านการถ่ายเชื้อหลายครั้ง:

• ในจุลชีววิทยาอาหาร เป็นที่ยอมรับกันโดยทั่วไปว่าการเปลี่ยนแปลงทางพันธุกรรมอาจเกิดขึ้นหลังผ่านไป 5–30 รุ่น โดยขึ้นอยู่กับชนิด อุณหภูมิ อาหารเลี้ยงเชื้อ และสุขอนามัย (Giraffa et al., 2008)
• การศึกษาการหมักด้วย Lactobacillus delbrueckii และ Streptococcus thermophilus แสดงให้เห็นว่า หลังจากผ่านไปประมาณ 10–25 รุ่น อาจเกิดการเปลี่ยนแปลงในประสิทธิภาพการหมักได้ (เช่น ความเป็นกรดลดลง กลิ่นหอมเปลี่ยนไป) (O’Sullivan et al., 2002)
• สำหรับ Lactobacillus reuteri โดยเฉพาะ เป็นที่ทราบกันว่าคุณสมบัติโพรไบโอติกของมันอาจแตกต่างกันอย่างมาก ขึ้นอยู่กับชนิดย่อย สายพันธุ์ที่แยกได้ และสภาวะแวดล้อม (Walter et al., 2011)

ข้อมูลเหล่านี้ชี้ให้เห็นว่า 20 รุ่นเป็นแนวทางที่รอบคอบและสมเหตุสมผลในการรักษาความสมบูรณ์ของหัวเชื้อ โดยเฉพาะหากต้องการคงไว้ซึ่งประโยชน์ต่อสุขภาพ (เช่น การผลิตออกซิโทซิน)

สรุป: 20 รุ่นเป็นจุดประนีประนอมที่เหมาะสมในทางปฏิบัติ

ยังไม่สามารถระบุได้อย่างแน่ชัดทางวิทยาศาสตร์ว่า 20 คือ “จำนวนมหัศจรรย์” หรือไม่ แต่:

• โดยทั่วไปไม่จำเป็นต้องทิ้งหัวเชื้อก่อนครบ 10 รุ่น
• การทำเกิน 30 รุ่นเพิ่มความเสี่ยงต่อการกลายพันธุ์หรือการปนเปื้อน
• การทำ 20 รุ่นเทียบเท่ากับการใช้งานประมาณ 5–10 เดือน (ขึ้นอยู่กับปริมาณการบริโภค) ซึ่งเป็นช่วงเวลาที่เหมาะสมสำหรับการเริ่มต้นใหม่ด้วยหัวเชื้อสด

คำแนะนำในการปฏิบัติ:

หลังจากทำโยเกิร์ตครบไม่เกิน 20 รุ่น ควรเริ่มแนวทางใหม่โดยใช้หัวเชื้อสดจากแคปซูล โดยเฉพาะหากต้องการใช้ L. reuteri เป็น “สายพันธุ์ที่สูญหายไป” สำหรับไมโครไบโอมของคุณโดยเฉพาะ

ประโยชน์ที่ได้รับในแต่ละวันจากโยเกิร์ต SIBO

ฟื้นฟูไมโครไบโอมด้วยสายพันธุ์ที่สูญหายไป ด้วยโยเกิร์ตจาก L. reuteri, L. gasseri และ B. coagulans

ไมโครไบโอมมีบทบาทสำคัญต่อสุขภาพของเรา โดยไม่ได้ส่งผลเฉพาะต่อการย่อยอาหารเท่านั้น แต่ยังส่งผลต่อระบบภูมิคุ้มกันและระบบประสาทลำไส้ ซึ่งเชื่อมโยงอย่างใกล้ชิดกับสมอง (Foster et al., 2017) ความไม่สมดุลของการตั้งถิ่นฐานของจุลินทรีย์ โดยเฉพาะในลำไส้เล็ก อาจนำไปสู่อาการผิดปกติในวงกว้าง

ระบบประสาทลำไส้ (ENS) ซึ่งมักเรียกว่า “สมองที่สองของลำไส้” เป็นระบบประสาทอิสระในทางเดินอาหาร ประกอบด้วยเซลล์ประสาทมากกว่า 100 ล้านเซลล์ที่ทอดยาวตลอดผนังลำไส้ทั้งหมด ซึ่งมากกว่าในไขสันหลัง ENS ควบคุมกระบวนการสำคัญหลายอย่างได้อย่างอิสระ ได้แก่ การควบคุมการเคลื่อนไหวของลำไส้ (เพอริสตัลซิส) การหลั่งน้ำย่อย การไหลเวียนเลือดไปยังเยื่อเมือก และแม้แต่การประสานงานของกลไกภูมิคุ้มกันบางส่วนในลำไส้ (Furness, 2012)

แม้จะทำงานอย่างเป็นอิสระ แต่สมองลำไส้มีความเชื่อมโยงอย่างใกล้ชิดกับสมองผ่านทางเดินประสาท โดยเฉพาะเส้นประสาทเวกัส ความเชื่อมโยงนี้เรียกว่าแกนลำไส้–สมอง อธิบายได้ว่าทำไมความเครียดทางจิตใจ เช่น ความเครียด จึงส่งผลต่อการย่อยอาหาร และทำไมไมโครไบโอมที่เสียสมดุลจึงส่งผลต่ออารมณ์ การนอนหลับ และสมาธิด้วย (Cryan et al., 2019)

SIBO (ภาวะแบคทีเรียเจริญมากเกินไปในลำไส้เล็ก) หมายถึงการที่แบคทีเรียในลำไส้เล็กเพิ่มจำนวนมากเกินไป โดยมีจำนวนสูงผิดปกติหรือเป็นแบคทีเรียผิดประเภท จุลินทรีย์เหล่านี้รบกวนการดูดซึมสารอาหารและทำให้เกิดอาการต่าง ๆ เช่น ท้องอืด ปวดท้อง ภาวะขาดสารอาหาร และการไม่ทนต่ออาหารบางชนิด (Rezaie et al., 2020)

สาเหตุที่พบบ่อยของ SIBO คือการเคลื่อนไหวของลำไส้ที่ช้าลงหรือผิดปกติ การเคลื่อนไหวของลำไส้ที่เรียกเช่นนี้มีหน้าที่ลำเลียงก้อนอาหารผ่านทางเดินอาหารด้วยการเคลื่อนไหวเป็นคลื่น

หากกลไกการชำระล้างตามธรรมชาตินี้ ซึ่งเรียกว่าการเคลื่อนไหวของลำไส้ถูกรบกวน การเคลื่อนผ่านของสิ่งที่อยู่ภายในลำไส้จะช้าลง ส่งผลให้แบคทีเรียสะสมและเพิ่มจำนวนจนมีปริมาณสูงผิดปกติในลำไส้เล็ก และนำไปสู่ภาวะแบคทีเรียเจริญมากเกินไป การเพิ่มจำนวนของแบคทีเรียอย่างผิดปกตินี้เป็นลักษณะเด่นของ SIBO และอาจทำให้เกิดอาการผิดปกติทางการย่อยอาหารและการอักเสบได้ (Rezaie et al., 2020)

การใช้ยาปฏิชีวนะซ้ำหลายครั้ง ความเครียดเรื้อรัง หรือการรับประทานอาหารที่มีกากใยน้อย ล้วนสามารถรบกวนสมดุลของไมโครไบโอมให้เสียไปมากขึ้นได้ ไม่เพียงแต่ความเครียดเรื้อรังเท่านั้น แต่ความเครียดระยะสั้นก็ทำให้ลำไส้ทำงานน้อยกว่าปกติได้เช่นกัน ในสถานการณ์ที่มีความเครียด ร่างกายจะหลั่งฮอร์โมนความเครียด เช่น อะดรีนาลีนและคอร์ติซอล ซึ่งส่งผลต่อระบบประสาทอัตโนมัติและกระตุ้นการตอบสนองแบบ “ปิดการทำงาน”

การตอบสนองนี้ลดการเคลื่อนไหวของลำไส้ ลดการไหลเวียนเลือดไปยังลำไส้ และชะลอการทำงานของระบบย่อยอาหาร เพื่อสงวนพลังงานไว้สำหรับการตอบสนองแบบ “สู้หรือหนี” การยับยั้งการทำงานของลำไส้ชั่วคราวนี้ส่งเสริมการสะสมของแบคทีเรียในลำไส้เล็ก และอาจเอื้อต่อการเกิดภาวะแบคทีเรียเจริญมากเกินไป (Konturek et al., 2011)

วิธีที่มุ่งเป้าเพื่อสนับสนุนสมดุลของจุลินทรีย์ในลำไส้เล็กคือการผลิตโยเกิร์ตโพรไบโอติกที่มีสายพันธุ์แบคทีเรียเฉพาะ ได้แก่ Limosilactobacillus reuteri, Lactobacillus gasseri และ Bacillus coagulans, จุลินทรีย์โพรไบโอติกสามชนิดที่มีศักยภาพในการจัดการปัญหาที่เกี่ยวข้องกับ SIBO ตามหลักฐานที่มีการบันทึกไว้ รวมถึงการยับยั้งเชื้อก่อโรค การปรับการทำงานของระบบภูมิคุ้มกัน และการปกป้องเยื่อบุลำไส้ (Savino et al., 2010; Park et al., 2018; Hun, 2009)

ในบทนี้ คุณจะได้เรียนรู้วิธีทำโยเกิร์ต SIBO ที่บ้านได้อย่างง่ายดาย คำแนะนำทีละขั้นตอนที่ให้มาจะแสดงวิธีหมักสายพันธุ์ทั้งสามที่คัดสรรมาโดยเฉพาะ เพื่อสร้างอาหารโพรไบโอติกที่เหมาะสำหรับผู้ที่แพ้แลคโตสด้วย

การเสริมสร้างไมโครไบโอม – บทบาทของ Lost Species

ไมโครไบโอมของมนุษย์กำลังเปลี่ยนแปลงอย่างลึกซึ้ง วิถีชีวิตสมัยใหม่ของเรา ซึ่งมีลักษณะเด่นคือการรับประทานอาหารแปรรูปสูง มาตรฐานสุขอนามัยที่เข้มงวด การผ่าคลอด ระยะเวลาให้นมแม่ที่สั้นลง และการใช้ยาปฏิชีวนะบ่อยครั้ง ทำให้สายพันธุ์จุลินทรีย์บางชนิดซึ่งเคยเป็นส่วนหนึ่งของระบบนิเวศภายในร่างกายของเรามานับพันปี แทบไม่พบในลำไส้มนุษย์อีกต่อไป

จุลินทรีย์เหล่านี้เรียกว่า “Lost Species” ซึ่งหมายถึง “สายพันธุ์ที่สูญหายไป”

การศึกษาทางวิทยาศาสตร์ชี้ว่า การสูญเสียสายพันธุ์เหล่านี้มีความเชื่อมโยงกับการเพิ่มขึ้นของปัญหาสุขภาพสมัยใหม่ เช่น โรคภูมิแพ้ โรคภูมิคุ้มกันทำลายตนเอง การอักเสบเรื้อรัง ความผิดปกติทางจิต และโรคทางเมแทบอลิซึม (Blaser, 2014)

การฟื้นฟูไมโครไบโอมด้วยการเติม “Lost Species” อย่างตรงจุด เปิดมุมมองใหม่ในการป้องกันและรักษาโรคจากวิถีชีวิตสมัยใหม่หลายชนิด การนำจุลินทรีย์โบราณเหล่านี้กลับคืนมา เช่น ผ่านโพรไบโอติกชนิดพิเศษ อาหารหมัก หรือแม้แต่การปลูกถ่ายอุจจาระ เป็นแนวทางที่มีศักยภาพในการเสริมความหลากหลายของจุลินทรีย์ และเพิ่มความแข็งแรงในการปรับตัวของร่างกาย

สามสายพันธุ์สำคัญ สนับสนุนไมโครไบโอมอย่างเข้มแข็ง

ชุดเริ่มต้นประกอบด้วย Limosilactobacillus reuteri ซึ่งเป็น Lost Species ที่ระบุได้อย่างชัดเจน กล่าวคือ เป็นสายพันธุ์จุลินทรีย์ที่ลดลงอย่างมากหรือแทบหายไปจากระบบนิเวศในลำไส้ของชาวตะวันตกยุคใหม่

Lactobacillus gasseri พบได้น้อยกว่าในอดีต และพบได้น้อยในไมโครไบโอมของชาวตะวันตกจำนวนมากหากไม่ได้รับจากภายนอก แต่ไม่ถือเป็น Lost Species แบบดั้งเดิม

Bacillus coagulans ไม่ใช่จุลินทรีย์ประจำลำไส้ในความหมายอย่างเคร่งครัด แต่เป็นจุลินทรีย์จากดินที่สร้างสปอร์และพบในลำไส้เป็นครั้งคราวเท่านั้น จุลินทรีย์ชนิดนี้ไม่ใช่ Lost Species แต่เป็นสายพันธุ์หายากที่นำเข้าสู่ร่างกายและมีคุณสมบัติพิเศษในการช่วยเสริมความมั่นคงให้ลำไส้

ดังนั้น การผสมผสานนี้จึงรวม Lost Species แบบดั้งเดิมเข้ากับสายพันธุ์หายากแต่ได้รับการพิสูจน์แล้ว เพื่อช่วยสนับสนุนไมโครไบโอมของคุณอย่างตรงจุดและหลากหลาย

Limosilactobacillus reuteri – จุลินทรีย์สำคัญต่อสุขภาพ

Limosilactobacillus reuteri คืออะไร

Limosilactobacillus reuteri (ชื่อเดิม: Lactobacillus reuteri) เป็นแบคทีเรียโพรไบโอติกที่เดิมเคยเป็นส่วนหนึ่งของไมโครไบโอมในมนุษย์อย่างสม่ำเสมอ โดยเฉพาะในทารกที่กินนมแม่และผู้คนในวัฒนธรรมดั้งเดิม อย่างไรก็ตาม ในสังคมสมัยใหม่และสังคมอุตสาหกรรม แบคทีเรียชนิดนี้แทบสูญหายไปเป็นส่วนใหญ่ ซึ่งสันนิษฐานว่าเกิดจากการผ่าคลอด การใช้ยาปฏิชีวนะ สุขอนามัยที่มากเกินไป และการรับประทานอาหารที่มีสารอาหารไม่เพียงพอ (Blaser, 2014)

L. reuteri มีความโดดเด่นด้วยความสามารถที่ไม่ธรรมดา นั่นคือสามารถมีปฏิสัมพันธ์โดยตรงกับระบบภูมิคุ้มกัน สมดุลฮอร์โมน และแม้แต่ระบบประสาทส่วนกลาง งานวิจัยจำนวนมากแสดงให้เห็นว่าแบคทีเรียประจำถิ่นในไมโครไบโอมชนิดนี้อาจส่งผลดีต่อการย่อยอาหาร การนอนหลับ การควบคุมความเครียด การเติบโตของกล้ามเนื้อ และสุขภาวะทางอารมณ์

สรุปคุณสมบัติสำคัญของ Limosilactobacillus reuteri

• ส่งเสริมไมโครไบโอมที่แข็งแรง
• กระตุ้นการผลิตออกซิโทซินผ่านแกนลำไส้–สมอง
• ช่วยควบคุมระบบภูมิคุ้มกันและมีฤทธิ์ต้านการอักเสบ
• ช่วยให้นอนหลับสนิทยิ่งขึ้น
• ช่วยสนับสนุนความต้องการทางเพศและการทำงานทางเพศ
• ส่งเสริมการเติบโตของกล้ามเนื้อ
• ช่วยลดไขมันในช่องท้อง
• ช่วยให้อารมณ์คงที่
• ช่วยปรับสภาพผิว
• ช่วยเพิ่มสมรรถภาพทางกาย

Lactobacillus gasseri – คู่หูสารพัดประโยชน์สำหรับลำไส้และกระบวนการเผาผลาญ

Lactobacillus gasseri คืออะไร?

Lactobacillus gasseri เป็นแบคทีเรียโพรไบโอติกที่พบได้ตามธรรมชาติในลำไส้ของมนุษย์ แต่พบได้น้อยกว่าในสังคมสมัยใหม่ที่เป็นอุตสาหกรรมมากขึ้นเมื่อเทียบกับในอดีต (Kleerebezem & Vaughan, 2009) แบคทีเรียชนิดนี้อยู่ในกลุ่มแบคทีเรียกรดแลกติกและมีบทบาทสำคัญในการรักษาสมดุลของจุลินทรีย์ในลำไส้ให้มีสุขภาพดี

L. gasseri เป็นที่รู้จักจากผลดีที่หลากหลายต่อการย่อยอาหาร กระบวนการเผาผลาญ และระบบภูมิคุ้มกัน แม้จะไม่ถือเป็น “Lost Species” แบบคลาสสิก แต่การมีอยู่ของแบคทีเรียชนิดนี้ในลำไส้ของผู้คนจำนวนมากในปัจจุบันลดลงอย่างมีนัยสำคัญ

เหตุใด L. gasseri จึงมีความเกี่ยวข้อง?

Lactobacillus gasseri ช่วยส่งเสริมสุขภาพได้หลายด้าน โดยเฉพาะกระบวนการเผาผลาญ การทำงานของลำไส้ และระบบภูมิคุ้มกัน ความสามารถในการลดเนื้อเยื่อไขมันและยับยั้งการอักเสบทำให้เป็นโพรไบโอติกที่สำคัญสำหรับผู้ที่มีน้ำหนักเกินหรือมีปัญหาด้านการเผาผลาญ แม้ปัจจุบัน L. gasseri จะพบได้น้อยกว่าในประชากรดั้งเดิม แต่ก็ไม่ใช่ตัวแทนคลาสสิกของ “Lost Species” และเป็นส่วนเสริมที่มีคุณค่าต่อไมโครไบโอมที่มีสุขภาพดี

สรุปคุณสมบัติสำคัญของ Lactobacillus gasseri:

• ช่วยสนับสนุนสมดุลของไมโครไบโอมในลำไส้
• ส่งเสริมการผลิตกรดแลกติกเพื่อควบคุมค่า pH
• ช่วยสลายไขมันหน้าท้องและไขมันในช่องท้อง
• ช่วยสนับสนุนกระบวนการเผาผลาญ
• มีส่วนช่วยลดการอักเสบ
• อาจช่วยปรับการทำงานของระบบภูมิคุ้มกัน
• ส่งเสริมสุขภาพระบบย่อยอาหาร
• ช่วยส่งเสริมสุขภาวะโดยรวม

Bacillus coagulans – ผู้ช่วยที่แข็งแกร่งเพื่อสุขภาพลำไส้และระบบภูมิคุ้มกัน

Bacillus coagulans คืออะไร?

Bacillus coagulans เป็นแบคทีเรียโพรไบโอติกที่สร้างสปอร์ โดยมีคุณสมบัติโดดเด่นด้านความทนทานต่อความร้อน กรด และการเก็บรักษา (Elshaghabee et al., 2017) ต่างจากโพรไบโอติกหลายชนิด B. coagulans สามารถผ่านกระเพาะอาหารได้ดีเป็นพิเศษและเจริญเติบโตในลำไส้ได้อย่างแข็งขัน ด้วยคุณสมบัติเหล่านี้ จึงมักนำมาใช้ในผลิตภัณฑ์เสริมอาหารและอาหารหมัก

B. coagulans พบได้ในอาหารดั้งเดิม เช่น ผักหมักและผลิตภัณฑ์จากเอเชียบางชนิด มีส่วนสำคัญอย่างมากต่อความเสถียรและสุขภาพของไมโครไบโอม

แบคทีเรียที่สร้างสปอร์ – คนสวนของไมโครไบโอม

แบคทีเรียโพรไบโอติกที่สร้างสปอร์ เช่น Bacillus coagulans ได้รับการเรียกขานในการวิจัยไมโครไบโอมว่าเป็น “คนสวน” ของลำไส้ ชื่อนี้มาจากความสามารถพิเศษในการควบคุมระบบนิเวศจุลินทรีย์อย่างแข็งขันและรักษาสมดุลให้แข็งแรง คุณลักษณะสำคัญของแบคทีเรียเหล่านี้คือความสามารถในการสร้างสปอร์ เมื่อเผชิญกับสภาวะแวดล้อมที่ไม่เอื้ออำนวย จุลินทรีย์เหล่านี้สามารถเปลี่ยนไปอยู่ในรูปแบบพักตัวที่ทนทานสูง ซึ่งเรียกว่าเอนโดสปอร์

สปอร์นี้ไม่ใช่รูปแบบสำหรับการสืบพันธุ์ แต่เป็นโหมดการอยู่รอด ในรูปสปอร์ สารพันธุกรรมจะได้รับการปกป้องอยู่ภายในเปลือกหนาหลายชั้นที่มีความหนาแน่นสูง ทำให้แบคทีเรียสามารถทนต่ออุณหภูมิสุดขั้ว ความแห้งแล้ง รังสี UV แอลกอฮอล์ ภาวะขาดออกซิเจน และโดยเฉพาะกรดในกระเพาะอาหาร

ดังนั้น แบคทีเรียที่สร้างสปอร์ เช่น B. coagulans จึงผ่านทางเดินอาหารไปได้แทบไม่เสียหาย เฉพาะในลำไส้เล็กเท่านั้น ภายใต้สภาวะที่เหมาะสม เช่น ความชื้น อุณหภูมิ และเกลือน้ำดี แบคทีเรียเหล่านี้จึงงอกกลับขึ้นมาและเริ่มทำงานอีกครั้ง (Setlow, 2014; Elshaghabee et al., 2017)

แบคทีเรียที่ไม่สร้างสปอร์แตกต่างกันอย่างไร

ในทางตรงกันข้าม สายพันธุ์ที่ไม่สร้างสปอร์ เช่น Limosilactobacillus reuteri หรือ Bifidobacterium infantis มีบทบาทที่จำเพาะมากกว่าในการสื่อสารระหว่างระบบประสาทและต่อมไร้ท่อ โดยมีอิทธิพลต่อเส้นทางการส่งสัญญาณระหว่างลำไส้ ระบบประสาท และระบบฮอร์โมน

แบคทีเรียโพรไบโอติกที่ไม่สร้างสปอร์ เช่น Limosilactobacillus reuteri และ Bifidobacterium infantis มีส่วนร่วมอย่างแข็งขันในการควบคุมระบบประสาทและต่อมไร้ท่อ ซึ่งหมายถึงการปรับแต่งอย่างละเอียดระหว่างระบบประสาทกับระบบฮอร์โมน จุลินทรีย์เหล่านี้สร้างสารตั้งต้นของสารสื่อประสาท เช่น ทริปโตเฟน (สารตั้งต้นของเซโรโทนิน) หรือ GABA (กรดแกมมา-อะมิโนบิวทีริก) และกระตุ้นการหลั่งสารสื่อกลางสำคัญ เช่น เซโรโทนินและออกซิโทซิน ผ่านตัวรับในลำไส้ รวมถึงผ่านเส้นประสาทเวกัส

ด้วยวิธีนี้ แบคทีเรียเหล่านี้จึงมีอิทธิพลต่อกระบวนการทางอารมณ์และฮอร์โมน เช่น อารมณ์ การจัดการความเครียด คุณภาพการนอนหลับ และการสร้างความผูกพันทางสังคม ผลของแบคทีเรียเหล่านี้ต่อสิ่งที่เรียกว่าแกนลำไส้–สมองมีหลักฐานรองรับเป็นอย่างดี และกำลังได้รับการศึกษาด้านการบำบัดเพิ่มขึ้น โดยเฉพาะในบริบทของโรคที่เกี่ยวข้องกับความเครียดและอาการเจ็บป่วยทางจิตสรีรวิทยา (Buffington et al., 2016; O’Mahony et al., 2015)

แบคทีเรียที่สร้างสปอร์ เช่น Bacillus coagulans ออกฤทธิ์หลักเฉพาะที่ในลำไส้ โดยช่วยส่งเสริมสมดุลของจุลินทรีย์ในลำไส้และเสริมความแข็งแรงให้แก่การทำงานในการปกป้องของเยื่อบุลำไส้ จึงช่วยสนับสนุนการทำงานของแนวกั้นลำไส้และช่วยควบคุมจุลินทรีย์ที่เป็นอันตราย

ต่างจากแบคทีเรียที่ไม่สร้างสปอร์ แบคทีเรียเหล่านี้มีผลโดยตรงต่อการทำงานของร่างกายในระดับสูงหรือการสื่อสารระหว่างลำไส้กับสมองค่อนข้างจำกัด ผลหลักของแบคทีเรียเหล่านี้เกิดขึ้นในสภาพแวดล้อมจุลภาคของลำไส้เป็นสำคัญ (Elshaghabee et al., 2017; Mazanko et al., 2018)

แบคทีเรียในลำไส้ชนิดอื่นที่สร้างสปอร์

นอกจาก Bacillus coagulans แล้ว สายพันธุ์ต่อไปนี้ก็เป็นจุลินทรีย์ที่สร้างสปอร์เช่นกัน:

• Bacillus subtilis – จุลินทรีย์แห่งปี 2023 เป็นที่รู้จักจากนัตโตะ ช่วยรักษาสมดุลของไมโครไบโอมและผลิตเอนไซม์
• Clostridium butyricum – ผลิตบิวทิเรตและมีฤทธิ์ต้านการอักเสบ
• Bacillus clausii – มีหลักฐานยืนยันว่ามีประสิทธิภาพต่ออาการท้องเสียหลังใช้ยาปฏิชีวนะ
• Bacillus indicus – ผลิตแคโรทีนอยด์ที่มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ

จุลินทรีย์เหล่านี้ยังมีความทนทานสูง และช่วยควบคุมการทำงานของภูมิคุ้มกัน ความสมบูรณ์ของเกราะป้องกัน และสมดุลของจุลินทรีย์ (Cutting, 2011; Elshaghabee et al., 2017)

เหตุใด Bacillus coagulans จึงมีความสำคัญ?

ด้วยความแข็งแกร่งสูงและประสิทธิภาพด้านโพรไบโอติก Bacillus coagulans จึงเป็นพันธมิตรที่มีคุณค่าสำหรับสุขภาพลำไส้ โดยเฉพาะในผู้ที่มีระบบย่อยอาหารไวต่อสิ่งกระตุ้นหรือมีปัญหาลำไส้เรื้อรัง อีกทั้งยังช่วยเสริมการทำงานของโพรไบโอติกสายพันธุ์อื่นด้วยความสามารถเฉพาะตัวในการคงประสิทธิภาพในรูปสปอร์ แม้อยู่ภายใต้สภาวะไม่เอื้ออำนวย

สรุปลักษณะสำคัญของ Bacillus coagulans:

• ช่วยฟื้นฟูไมโครไบโอมให้กลับมามีสุขภาพดี
• ผลิตกรดแลกติกเพื่อควบคุมค่า pH ในลำไส้
• ช่วยเสริมการย่อยอาหารและการดูดซึมสารอาหาร
• ปรับการทำงานของระบบภูมิคุ้มกันและลดการอักเสบ
• บรรเทาอาการลำไส้แปรปรวนและอาการผิดปกติของระบบย่อยอาหารอื่น ๆ
• รอดพ้นจากการเดินทางผ่านกระเพาะอาหารได้ด้วยการสร้างสปอร์
• ทนความร้อนและกรด จึงช่วยให้เก็บรักษาได้ง่าย
• ช่วยรักษาสมดุลของจุลินทรีย์ในลำไส้ผ่านการสร้างสปอร์
• ส่งเสริมการควบคุมภูมิคุ้มกัน
• ช่วยลดการอักเสบ
• เพิ่มความต้านทานต่อปัจจัยก่อความเครียด
• มีผลดีต่อเกราะป้องกันของลำไส้

แหล่งข้อมูล:

• https://innercircle.drdavisinfinitehealth.com/probiotic_yogurt_recipes
• Foster, J. A., Rinaman, L., & Cryan, J. F. (2017). ความเครียดและแกนลำไส้–สมอง: การควบคุมโดยไมโครไบโอม Neurobiology of Stress, 7, 124–136.
• Furness, J. B. (2012). ระบบประสาทลำไส้และประสาทแกสโตรเอนเทอโรโลยี Nature Reviews Gastroenterology & Hepatology, 9(5), 286–294.
• Cryan, J. F., O’Riordan, K. J., Cowan, C. S. M., Sandhu, K. V., Bastiaanssen, T. F. S., Boehme, M., ... และ Dinan, T. G. (2019). แกนจุลชีพ–ลำไส้–สมอง Physiological Reviews, 99(4), 1877–2013.
• Rezaie, A., Buresi, M., Lembo, A., Lin, H., McCallum, R., Rao, S., ... และ Pimentel, M. (2020). การตรวจลมหายใจด้วยไฮโดรเจนและมีเทนในโรคระบบทางเดินอาหาร: ฉันทามติแห่งอเมริกาเหนือ The American Journal of Gastroenterology, 115(5), 662–681.
• Rezaie, A., Buresi, M., Lembo, A., Lin, H. C., McCallum, R., Rao, S., ... และ Pimentel, M. (2020). การตรวจลมหายใจโดยอาศัยไฮโดรเจนและมีเทนในความผิดปกติของระบบทางเดินอาหาร: ฉันทามติอเมริกาเหนือ The American Journal of Gastroenterology, 115(5), 675–684. https://doi.org/10.14309/ajg.0000000000000544
• Konturek, P. C., Brzozowski, T. และ Konturek, S. J. (2011). ความเครียดและลำไส้: พยาธิสรีรวิทยา ผลกระทบทางคลินิก แนวทางการวินิจฉัย และทางเลือกในการรักษา Journal of Physiology and Pharmacology, 62(6), 591–599.
• Savino, F., Cordisco, L., Tarasco, V., Locatelli, E., Di Gioia, D. และ Matteuzzi, D. (2010). Lactobacillus reuteri DSM 17938 ในอาการโคลิกในทารก: การทดลองแบบสุ่ม ปกปิดสองฝ่าย และควบคุมด้วยยาหลอก Pediatrics, 126(3), e526–e533.
• Park, J. H., Lee, J. H. และ Shin, S. C. (2018). ผลการรักษาของ Lactobacillus gasseri ต่อโรคลำไส้ใหญ่อักเสบเรื้อรังและจุลชีพในลำไส้ Journal of Microbiology and Biotechnology, 28(12), 1970–1979.
• Hun, L. (2009). Bacillus coagulans ช่วยให้อาการปวดท้องและท้องอืดในผู้ป่วย IBS ดีขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ Postgraduate Medicine, 121(2), 119–124.
• Kadooka, Y., Sato, M., Imaizumi, K. และคณะ (2010). การควบคุมความอ้วนลงพุงด้วยโปรไบโอติก (Lactobacillus gasseri SBT2055) ในผู้ใหญ่ที่มีแนวโน้มเป็นโรคอ้วนจากการทดลองแบบสุ่มมีกลุ่มควบคุม European Journal of Clinical Nutrition, 64(6), 636-643.
• Kleerebezem, M. และ Vaughan, E. E. (2009). แลคโตบาซิลลัสและบิฟิโดแบคทีเรียในลำไส้ที่เป็นโปรไบโอติก: แนวทางระดับโมเลกุลเพื่อศึกษาความหลากหลายและกิจกรรม Annual Review of Microbiology, 63, 269–290.
• Park, S., Bae, J.-H. และ Kim, J. (2013). ผลของ Lactobacillus gasseri BNR17 ต่อน้ำหนักตัวและมวลเนื้อเยื่อไขมันในหนูที่เป็นโรคอ้วนจากการรับประทานอาหาร Journal of Microbiology and Biotechnology, 23(3), 344-349.
• Kim, H. S., Lee, B. J. และ Lee, J. S. (2015). Lactobacillus gasseri ช่วยส่งเสริมการทำงานของแนวกั้นลำไส้ในเซลล์ Caco-2 Journal of Microbiology, 53(3), 169-176.
• Matsumoto, M., Inoue, R., Tsukahara, T. และคณะ (2008). ผลกระทบของจุลชีพในลำไส้ต่อเมแทบอโลมในลูเมนลำไส้ Scientific Reports, 8, 7800.
• Mayer, E. A., Tillisch, K. และ Gupta, A. (2014). แกนลำไส้/สมองและจุลชีพในลำไส้ The Journal of Clinical Investigation, 124(10), 4382–4390.
• Elshaghabee, F. M. F., Rokana, N., Gulhane, R. D., Sharma, C. และ Panwar, H. (2017). โปรไบโอติก Bacillus: Bacillus coagulans ซึ่งเป็นตัวเลือกที่มีศักยภาพสำหรับอาหารเชิงหน้าที่และเภสัชภัณฑ์ Frontiers in Microbiology, 8, 1490.
• Shah, N., Yadav, S., Singh, A., & Prajapati, J. B. (2019). ประสิทธิผลของ Bacillus coagulans ในการส่งเสริมสุขภาพลำไส้: บททบทวน. Journal of Applied Microbiology, 126(4), 1224-1233.
• Ghane, M., Azadbakht, M., & Salehi-Abargouei, A. (2020). ผลของการเสริม Bacillus coagulans ต่อกิจกรรมของเอนไซม์ย่อยอาหารและจุลชีพในลำไส้: การทบทวนอย่างเป็นระบบ. Probiotics and Antimicrobial Proteins, 12, 1252–1261.
• Majeed, M., Nagabhushanam, K., & Arshad, M. (2018). ผลด้านการปรับภูมิคุ้มกันของ Bacillus coagulans ในภาวะสุขภาพและโรค. Microbial Pathogenesis, 118, 101-105.
• Khatri, S., Mishra, R., & Jain, S. (2019). Bacillus coagulans สำหรับการรักษาภาวะลำไส้แปรปรวน: การทดลองแบบสุ่มมีกลุ่มควบคุม. Clinical and Experimental Gastroenterology, 12, 69–76.
• Buffington, S. A. et al. (2016). การฟื้นฟูจุลชีพช่วยย้อนกลับความบกพร่องด้านสังคมและไซแนปส์ในลูกหลานที่เกิดจากอาหารของมารดา. Cell, 165(7), 1762–1775.
• Cutting, S. M. (2011). โพรไบโอติกส์ Bacillus. Food Microbiology, 28(2), 214–220.
• Elshaghabee, F. M. F. et al. (2017). Bacillus ในฐานะโพรไบโอติกส์ที่มีศักยภาพ: สถานะ ข้อกังวล และมุมมองในอนาคต. Frontiers in Microbiology, 8, 1490.
• Ghelardi, E. et al. (2015). ผลกระทบของสปอร์ Bacillus clausii ต่อองค์ประกอบและรูปแบบเมแทบอลิซึมของจุลชีพในลำไส้. Frontiers in Microbiology, 6, 1390.
• Hong, H. A. et al. (2005). การใช้แบคทีเรียที่สร้างสปอร์เป็นโพรไบโอติกส์. FEMS Microbiology Reviews, 29(4), 813–835.
• Mazanko, M. S. et al. (2018). คุณสมบัติด้านโพรไบโอติกส์ของแบคทีเรีย Bacillus. Veterinaria i Kormlenie, (4), 30–35.
• O'Mahony, S. M. et al. (2015). ไมโครไบโอมและโรคในวัยเด็ก: มุ่งเน้นที่แกนสมอง-ลำไส้. Birth Defects Research Part C, 105(4), 296–313.
• Setlow, P. (2014). การงอกของสปอร์ของสายพันธุ์ Bacillus: สิ่งที่เรารู้และยังไม่รู้. Journal of Bacteriology, 196(7), 1297–1305.
• Buffington SA et al. (2016): การฟื้นฟูจุลชีพช่วยย้อนกลับความบกพร่องด้านสังคมและไซแนปส์ในลูกหลานที่เกิดจากอาหารของมารดา. Cell 165(7): 1762–1775.
• O’Mahony SM et al. (2015): ไมโครไบโอมและโรคในวัยเด็ก: มุ่งเน้นที่แกนสมอง–ลำไส้. Birth Defects Research Part C 105(4): 296–313.
• Elshaghabee FMF, Rokana N, Gulhane RD, Sharma C, Panwar H. โพรไบโอติกส์ Bacillus: ภาพรวม. Front Microbiol. 2017;8:1490. doi:10.3389/fmicb.2017.01490
• Mazanko MS, Morozov IV, Klimenko NS, Babenko VA. ผลด้านการปรับภูมิคุ้มกันของสปอร์ Bacillus coagulans ในลำไส้. Microbiology. 2018;87(3):336–343. doi:10.1134/S0026261718030148